Mynox® Gold 杀灭支原体步骤详解

随着分子生物学的发展，核酸编辑、扩增、测序、鉴定等以核酸为中心的技术变得越来越先进和方便，尤其是单细胞RNA测序、数字PCR和转基因技术的出现，使得核酸技术应用越来越广泛，灵敏度也越来越高。

但同时也产生一些弊端，主要是：

1）PCR实验造成DNA大量合成，不可避免地给实验室带来核酸污染。由于核酸产物不能自动降解，因此只会不断积聚；

2）由于灵敏度升高，少量污染的DNA或RNA分子也会被检测出来，从而造成实验偏差。

3）核酸污染也给实验人员带来未知的健康风险。

而传统的紫外照射法对祛除DNA污染并不理想，因为它仅对500bp以上长片段有效，对短片段效果不大。

那么，有没有一种更好的方法呢？

Mynox® Gold 杀灭支原体 步骤详解

 

Mynox® Gold含惟一的支原体杀除剂（而非抑制剂）Mynox®以及复合抗生素，用于祛除污染珍贵细胞或病毒种子批中的支原体和保种用。一个疗程它由1管*治疗液和3管主治疗液，每管均为520μl即用型无菌溶液，2℃~8℃避光保存。*治疗液可以杀灭大部分支原体，对细胞没有毒害，主治疗液杀灭所有剩余的支原体，实现**。

其操作示意图如下：

 

实验所需耗材：25cm2
细胞培养瓶或60 mm 培养皿

支原体消除结果评估：采用支原体检测试剂盒如Venor® GeM系列。

具体操作步骤如下（超净台内操作）：

1. 制备“*治疗混合液”

1）吸量管吸取4.5ml含5%胎牛血清的细胞培养基，加入到无菌的15ml离心管中。再加入500 µl Mynox ® Gold*治疗液（橘黄色盖）。

2）将15ml离心管内的培养基和Mynox® Gold*治疗液混匀。

3）将15ml离心管内的混合液（5ml）转移至无菌的25cm2细胞培养瓶或60 mm 培养皿中。

2. 加入细胞

按细胞正常传代来操作。对于贴壁细胞，使用胰酶将细胞解离打散。

1）注意：显微镜下观察，确保为单细胞悬液，无细胞成团。

2）吸量管吸取5ml单细胞悬液（含104–105细胞，细胞培养基含5%胎牛血清），加入到上述的“*治疗混合液”中。此时总体积为10ml。

注意：加入细胞时，吸头插入到液面下，以避免产生气溶胶。吸头不要触及培养瓶/皿的内壁。

3）轻轻摇晃培养瓶/皿，以避免细胞分布不均。将细胞转至孵箱正常培养。

3. 主要治疗

1）细胞长至80~90%汇合。

2）细胞正常传代。取9.5ml已加新鲜培养基的细胞，加到无菌培养瓶或培养皿中。再加入500 µl Mynox® Gold主治疗液（透明管盖）。调整胎牛血清浓度，不再将其浓度保持在5%，可恢复正常浓度。

3）加入主治疗液的细胞继续培养，再重复以上步骤2次（采用Mynox® Gold主治疗液 治疗2次）。

第3次主治疗液治疗后，支原体即*去除（细胞总共传了4代）

4. 支原体残留的检测

注意：支原体被Mynox®裂解后会释放DNA到培养基中，此时检测支原体会导致假阳性。应再正常培养四代后检测支原体。培养基更换和使用外源DNA酶可在1-2代内降低游离的支原体DNA。

建议采用高灵敏度的Venor ® GeM支原体检测试剂盒检查支原体。